实验室里，一台DYCP电泳仪正平稳运行，凝胶上条带清晰分离——这看似简单的操作背后，实则暗藏诸多细节。从凝胶浓度的精准配比，到电泳电压的毫厘把控，任何一个环节的疏忽都可能导致实验失败。本文将拆解DYCP琼脂糖水平电泳仪的核心操作步骤，手把手教你避开常见误区，让实验效率与结果质量双提升。
一、设备检查与试剂准备
操作前需确认
DYCP琼脂糖水平电泳仪主体无裂纹、电极无氧化，缓冲液槽无渗漏，槽盖与电极接线接触良好。推荐搭配电源，确保电压调节功能正常。试剂需使用新鲜配制的1×TAE或1×TBE缓冲液，核酸染料需按说明书比例稀释，避免使用过期或受污染试剂。
二、凝胶制备与参数选择
根据DNA片段大小选择琼脂糖浓度：大片段（>10kb）用0.8%凝胶，中片段（1-10kb）用1.0%-1.2%，小片段（<1kb）用1.5%-2.0%。以DYCP-31DN为例，称取对应质量琼脂糖加入锥形瓶，加入缓冲液后微波炉中高火加热30秒，摇匀后继续加热20秒至溶液透明无颗粒。冷却至50-60℃时加入染料，倒入胶室托盘（厚度3-4mm），室温静置25-30分钟至全部凝固。
三、上样与电泳参数设置
凝胶凝固后，垂直拔出梳子，将胶板放入电泳槽，确保加样孔靠近负极。倒入缓冲液至液面没过凝胶2-3mm，用移液器吸取预混6×Loading Buffer的样品，斜角45°对准加样孔中心缓慢推液，每孔上样量建议10-15μL。仪器支持高通量上样，可按从左到右顺序依次加样，边缘孔加入DNA Marker作为分子量对照。盖好槽盖后连接电极线，开启电源选择恒压模式，电压设置为50-70V，电泳时间40-60分钟，待溴酚蓝迁移至凝胶2/3处时停止。
四、结果观察与设备维护
电泳结束后关闭电源，取出凝胶置于凝胶成像系统，调整紫外灯波长至254nm或302nm，拍摄并保存图像。实验后需用蒸馏水冲洗电泳槽、胶室托盘和梳子，去除残留凝胶，晾干后存放于干燥通风环境。定期检查电极状态，若出现氧化生锈，用400目砂纸打磨确保电场均匀稳定。
更新时间：2025-12-28 
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